Flag标签蛋白纯化试剂盒
试剂盒组分
产品编号 | 预装柱 | 浓缩基础缓冲液(10×) | 浓缩洗脱缓冲液(10×) | 浓缩再生缓冲液(10×) |
PPR0023K | 1ml*2 | 30ml | 15ml | 15ml |
5ml | 30ml*2 | 30ml | 30ml |
一.产品介绍:
Flag标签是一个由八个亲水氨基酸组成的多肽片段,定位在融合蛋白表面,因此更易与抗体结合以及被肠激酶分解。Flag标签蛋白纯化试剂盒是以抗Flag(DYKDDDDK)抗体为亲和配体,一步纯化原核、酵母或哺乳动物细胞表达的Flag标签融合蛋白。Flag标签蛋白纯化试剂盒里的纯化填料以4%琼脂糖凝胶为基质,杂蛋白非特异性结合少,可用于Flag标签融合蛋白的纯化和免疫沉淀(IP)。
二. 产品使用操作:
1.样品准备
上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和pH值,可以用平衡液对样品或细胞培养液稀释,或者用平衡液透析。
样品在上样前建议离心或用0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
2.缓冲液的准备
基础缓冲液:按照实验所用量,取试剂盒中浓缩基础缓冲液,加入9倍体积的去离子水稀释成基础缓冲液;
洗脱液:按照实验所需用量,取试剂盒中浓缩洗脱液,加入9倍体积的去离子水稀释成洗脱液;
再生液:按照实验所需用量,取试剂盒中浓缩再生液,加入9倍体积的去离子水稀释成再生液;
缓冲液在使用之前建议用0.22μm或0.45μm滤膜过滤。
3.Frdbio® Flag Beads纯化柱的准备
取出试剂盒中预装柱平衡到室温,打开纯化柱底部开关,用3-5个体积去离子水冲洗柱床,随后用5-10个柱床体积基础缓冲液平衡柱子,确保柱床无气泡。
4.从样品中纯化目标蛋白
1)使用蠕动泵上样或者直接上样(重力法);
上样量不要超过柱子的结合能力。
2)上样完毕后,用基础缓冲液洗掉未结合的杂蛋白,直到到紫外吸收监测仪达到一个稳定的基线(一般需要10-15个柱体积);
3)使用洗脱液洗脱目的蛋白,顺次接收并做好标记,直到到紫外吸收监测仪达到一个稳定的基线(一般需要5-10个柱体积);
4)SDS-PAGE检测分析得到的纯化样品(包括流穿组分、洗杂组分和洗脱组分)以及原始样品。
5.纯化柱清洗、再生与保存。
1)5-10倍柱床体积的洗脱缓冲液继续清洗;
2)3倍柱床体积的去离子水清洗;
3)5-10倍柱床体积的0.1M NaOH溶液;
4)3倍柱床体积去离子水清洗后于含20%乙醇的PBS 2-8℃保存。