1. 试剂准备
缓冲液A(平衡缓冲液):10mM Na2HPO4,1.8mM KH2PO4,140mM NaCl,2.7mM KCl,调节pH值至8.0
缓冲液B(洗脱缓冲液):10mM Glutathione(还原型),50mM Tris-HCl,调节pH值至8.0。因Glutathione易氧化,需现用现配
2. 层析柱准备
2.1. 用去离子水冲洗层析柱底筛板与接头,确保柱底筛板上无气泡,关闭柱底出口,并在柱底部留出 1-2cm 的去离子水
2.2. 将GST亲和树脂悬浮,取2ml加入层析柱中,连接上恒流泵
2.3. 用5倍柱体积的缓冲液A进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用
3. 柱上酶切
3.1. 裂解菌体,充分离心后收集上清
3.2. 取上清加入层析柱,置于旋转培养器上,室温孵育1h,收集流出液,留样待检
3.4. 用5倍柱体积的缓冲液A进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液,留样待检
3.5. 向层析柱中添加适量3C酶,并添加适量体积的缓冲液A,室温下进行柱上酶切~3h
3.6. 分别收集流穿和3倍柱体积缓冲液B清洗的洗脱产物,SDS-PAGE分析结果
3.7. 取上一步骤得到的流穿于新的GST亲和树脂再次进行GST亲和层析,收集流穿,即为酶切后的目的蛋白组分
3.8. 将纯化过程中得到的样品(包括流出组分、洗杂组分和洗脱组分等)以及原始样品使用
SDS-PAGE 检测纯化及酶切效果
详细步骤可参照GST亲和层析介质使用说明书